ISSN: 2153-0637
Джун Ким
Рибосомный белок S3 (rpS3) является подлинным компонентом малой субъединицы рибосомы 40S. Однако он был известен как универсальный белок с множеством других внерибосомных функций в апоптозе, контроле клеточного цикла, репарации ДНК и т. д. Он обладает активностью эндонуклеазы репарации ДНК, которая связана с различными видами рака. Недавно мы обнаружили, что этот белок образует димер и секретируется после N-гликозилирования. Он секретируется только различными раковыми клетками, но не нормальными клетками. Мы также подтвердили, что rpS3 секретируется больше в среду, когда раковые клетки более инвазивны. Путь секреции оказался стандартным путем, зависимым от ER-Golgi. В настоящее время мы разрабатываем различные антитела против rpS3, которые могут быть использованы в качестве полезных реагентов для будущих биомаркеров рака.
Рибосомный белок S3 (rpS3) — это 243-аминокислотный компонент малой субъединицы рибосомы 40S. Он выполняет множество функций в трансляции и внерибосомных функциях, таких как апоптоз и репарация ДНК. RpS3 секретируется только в линиях раковых клеток. В настоящее время масс-спектрометрический анализ показал, что rpS3 гликозилирован по остатку Asn165. Точечная мутация в этом остатке снизила секрецию rpS3 в линиях раковых клеток. Секреция также ингибировалась ингибитором транспорта эндоплазматического ретикулума (ЭР)-Гольджи Брефельдином А и Туникамицином, ингибитором N-связанного гликозилирования. Было подтверждено, что N-связанное гликозилирование rpS3 необходимо для секреции rpS3 в культуральную среду через путь, зависимый от ЭР-Гольджи. RpS3 связался с конканавалином А, углеводсвязывающим лектиновым белком, в то время как обработка пептид-N-гликозидазой F сместила секретируемый rpS3 в полосу с более низкой молекулярной массой. Кроме того, мутант N165G rpS3 продемонстрировал сниженную секрецию по сравнению с диким типом. Анализ связывания in vitro выявил образование гомодимера rpS3 через N-концевую область (rpS3:1–85) и среднюю область (rpS3:95–158). Результаты показывают, что остаток Asn 165 rpS3 является критическим сайтом для N-связанного гликозилирования и прохождения через путь секреции ER-Golgi.
Рибосомный белок S3 (rpS3/ RPS3 /Ribosomal Protein S3) является составной частью 40 S рибосомной малой субъединицы, которая функционирует в трансляции. Внерибосомные функции включают репарацию ДНК, апоптоз и регуляцию транскрипции. RpS3 взаимодействует с nm23-H1, который действует как супрессор метастазирования в некоторых опухолях человека и предотвращает инвазивный потенциал в клетках HT1080. Кроме того, rpS3 является
сверхэкспрессируется в клетках колоректального рака, что позволяет предположить, что уровень rpS3 может быть связан с опухолеобразованием. Предыдущее исследование показало, что rpS3 секретируется во внеклеточную среду в димерной форме. Уровень секреции rpS3 был значительно повышен в высокозлокачественных клетках по сравнению с нормальными родительскими клетками. Это позволяет предположить, что секретируемый rpS3 может быть предполагаемым маркером злокачественных опухолей.
Около 10% всех белков человека являются секреторными белками. К ним относятся цитокины, гормоны, пищеварительные ферменты и иммуноглобулины. Их различные функции включают иммунную защиту, межклеточную коммуникацию, морфогенез, ангиогенез, апоптоз и клеточную дифференцировку. Большинство секреторных белков с аминоконцами или внутренними сигнальными последовательностями нацелены на поверхность клетки или внеклеточное пространство. Сигнальная последовательность распознается с помощью белка распознавания сигнала (SRP) и расщепляется, как только белок попадает в эндоплазматический ретикулум (ЭР). Вновь синтезированные белки выходят из ЭР и покрываются комплексом II белка оболочки, содержащим груз (COPII/SEC23A), который направляет их для транспортировки в аппарат Гольджи, где они модифицируются, обрабатываются, сортируются и отправляются к месту назначения. После прохождения через аппарат Гольджи секреторные белки сортируются и упаковываются в промежуточные продукты пост-Гольджи-транспорта, которые перемещаются к плазматической мембране и сливаются с поверхностью клетки.
Посттрансляционные модификации распространены в эукариотических секретируемых белках. Гликозилирование белков, одна из наиболее распространенных посттрансляционных модификаций во всех организмах, относится к присоединению сахаридных фрагментов к белкам. Гликозилирование участвует в сворачивании белков, взаимодействии, стабильности, подвижности, клеточной адгезии и передаче сигнала. Гликаны секретируемых белков важны для секреции белков, поскольку они влияют на сворачивание белков, предоставляют лиганды для шаперонов лектина, способствуют контролю качества в ЭР и опосредуют транзит и селективное нацеливание белков на протяжении всего секреторного пути. Два основных типа гликозилирования — это N-связанное и O-связанное гликозилирование. Гликаны присоединяются к полипептидным структурам посредством амидных связей с боковыми цепями аспарагина (Asn), тогда как гликозидные связи возникают с боковыми цепями серина/треонина (Ser/Thr), гидроксилизина или тирозина (Tyr), причем последний включает О-гликозилирование.
Примерно половина всех белков человека являются гликопротеинами, большинство из которых содержат структуры N- гликанов. N -гликаны изначально синтезируются как липидно-связанные олигосахариды-предшественники и переносятся от липидно-связанных олигосахаридов к выбранным остаткам Asn полипептидов, которые вошли в просвет ЭР. Эукариотические организмы обычно используют многосубъединичную олигосахарилтрансферазу на люменальной стороне мембраны ЭР для катализа переноса гликана к акцепторным пептидным последовательностям, которые состоят из трипептида Asn-X-(Ser/Thr) (и реже из Asn-X-цистеина (Cys) и других нестандартных последовательностей), где X может быть любой аминокислотой, за исключением пролина. Олигосахарилтрансфераза облегчает образование N-гликозидной связи между амидом боковой цепи Asn и олигосахаридом. Почти все гликаны гликопротеинов подвергаются обрезке и удлинению по мере прохождения через аппарат Гольджи.
Настоящее исследование демонстрирует, что rpS3 секретируется в среду клеточной культуры через ER-Golgi-зависимый путь. Секреция, обнаруженная с помощью анализа ELISA, может быть использована в качестве индикатора злокачественности раковых клеток in vitro . Также показано, что N-связанное гликозилирование важно для секреции rpS3 и что Asn165 является местом N-гликозилирования, что подтверждено жидкостной хроматографией-тандемной масс-спектрометрией (LC-MS/MS) и направленным мутагенезом. Наконец, rpS3 образует гомодимер посредством взаимодействия средней и N-концевой областей.
Биография :
Профессор Джун Ким получил степень бакалавра и магистра наук в Сеульском национальном университете, степень доктора наук в области биохимии в Калифорнийском университете в Беркли и постдокторантуру в Гарвардской медицинской школе. Он является профессором в Отделении наук о жизни и директором Центра радиационной безопасности и управления в Корейском университете, Сеул, Корея. Он опубликовал более 160 статей в известных журналах.